





滴加FITC-TSA:滴加FITC-TSA試劑,避光室溫反應5min。后TBST洗3次×10min,PBS洗1次×5min。
DAPI復染核:切片滴加DAPI染液,避光孵育8min,沖洗后滴加抗熒光淬滅封片1劑封片。
鏡檢拍照:切片于尼康正置熒光顯微鏡下觀察并采集圖像。(紫外激發波長330-380nm,發射波長420nm,發藍光;FAM(488)綠光激發波長465-495nm,發射波長515-555 nm,發綠光;CY3紅光激發波長510-560,發射波長590nm,發紅光。)

1、組織取材:組織取材應盡可能新鮮。由于組織RNA降解較快,所以新鮮組織和培養細胞在30 min 內固定。
2、細胞組織固定目的與注意事項:
(1)保持細胞結構;
(2)大限度地保持細胞內DNA或RNA的水平;
(3)使探針易于進入細胞或組織。
常用的固定劑是多聚甲醛,與其它醛類固定劑不同,分子病理技術服務,多聚甲醛不會與蛋白質產生廣泛的交叉連接,因而不會影響探針穿透入細胞或組織。

癌組織原位雜交實驗步驟:
1. 將準備做原位雜交的樣本常規脫水、浸蠟、包埋。切片厚度6-8μm。
2. 玻片的處理:一般采用多聚賴氨酸或APES。
3. 石蠟切片經常規脫蠟至水。30%H2O2 1份+蒸餾水10份混合,室溫5-10分鐘以滅活內源性酶。蒸餾水洗3次。
4. 暴露mRNA核酸片段:切片上滴加3%檸檬酸新鮮稀釋的胃蛋白酶(1ml 3% 檸檬酸加2滴濃縮型胃蛋白酶,混勻),37℃或室溫消化3--30分鐘(視標本新舊、厚薄自行調整)。原位雜交用PBS洗3次×5分鐘。蒸餾水洗1次。

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